La transferencia indirecta de indicios biológicos: un modelo de entomología forense

Contenido principal del artículo

Joel Martinez Quiroz
Giselle Bello Cruz
Raymundo Lael Ruiz Flores

Resumen

El presente trabajo desarrolla un modelo de entomología forense enfocado en la transferencia indirecta de indicios biológicos, particularmente en el contexto de agresiones sexuales y feminicidios. Se destaca la importancia de detectar en la víctima marcadores biológicos indicativos de la presencia de semen, como el antígeno prostático específico (PSA, por sus siglas en inglés), para sustentar la ocurrencia de la agresión.


El estudio utilizó carne de cerdo, junto con sangre y semen humanos para desarrollar un modelo experimental que simula un cadáver en descomposición. Se evaluó la capacidad de las larvas de mosca de los géneros Calliphora y Lucilia para transferir el semen a lo largo de su ciclo biológico. El modelo propuesto incluyó tres etapas fundamentales: la recolección de larvas hasta su tercer estadio, su conservación en etanol al 80% bajo refrigeración y la disección de una porción del estómago de los especímenes para su análisis. Los resultados evidenciaron que el PSA permaneció estable y detectable hasta nueve días después de la ovoposición de las moscas, lo que demuestra la persistencia de este marcador biológico a lo largo de los tres estadios larvarios. Se concluye que el modelo propuesto es económico, viable y con potencial para evaluar la persistencia y estabilidad de otros marcadores seminales, así como del material genético del presunto agresor.

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Biografía del autor/a

Giselle Bello Cruz, Ingeniería en Biomedicina, Universidad Anáhuac Campus Xalapa, México.

La autora es ingeniera biomédica egresada de la Universidad Anahuac Campus Xalapa y recientemente se distinguió como analista de laboratorio en Química Forense de la Dirección General de los Servicios Periciales en la FGE-Veracruz. Actualmente labora en el Hospital Policlínica de la ciudad de Xalapa, Veracruz.

Su participación en el trabajo versó en la preparación del modelo entomológico y los ensayos correspondientes, tanto preliminares como definitivos.

Raymundo Lael Ruiz Flores, Ingeniería en Biomedicina, Universidad Anáhuac Campus Xalapa, México.

El autor es ingeniero biomédico egresado de la Universidad Anahuac Campus Xalapa y recientemente se distinguió como analista de laboratorio en Química Forense de la Dirección General de los Servicios Periciales en la FGE-Veracruz.

Su participación en el trabajo versó en la preparación del modelo entomológico y los ensayos correspondientes, tanto preliminares como definitivos.

Citas

Houck MM, Siegel JA. The nature of evidence. En: Fundamentals of Forensic Science. Elsevier; 2010. p. 49–73.

La medición del feminicidio en México. Documentos de análisis y estadísticas [Internet]. Inegi.org.mx. [citado el 2 de abril de 2025]. Disponible en: https://www.inegi.org.mx/contenidos/productos/prod_serv/contenidos/espanol/bvinegi/productos/nueva_estruc/889463916284.pdf

Protocolo de investigación ministerial, policial y pericial para el delito de feminicidio [Internet]. Procuraduría General de la República [citado el 2 de abril de 2025]. Disponible en: https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/253267/Protocolo_Feminicidio.pdf

Sakurada, K., Watanabe, K., & Akutsu, T. Current methods for body fluid identification related to sexual crime: Focusing on saliva, semen, and vaginal fluid. Diagnostics (Basel, Switzerland). 2020; 10(9), 693. https://doi.org/10.3390/diagnostics10090693

Sessa F, Pomara C, Esposito M, Grassi P, Cocimano G, Salerno M. Indirect DNA transfer and forensic implications: A literature review. Genes (Basel). 2023; 14(12):2153. http://dx.doi.org/10.3390/genes14122153

Ballou S, Stolorow M, Taylor M, Bamberger PS, Brown L, Brown R, et al. The biological evidence preservation handbook : best practices for evidence handlers ; technical working group on biological evidence preservation. Gaithersburg (MD): National Institute of Standards and Technology; 2013.

Hughes DA, Szkuta B, van Oorschot RAH, Conlan XA. How the physicochemical substrate properties can influence the deposition of blood and seminal deposits. Forensic Sci. Int. 2024; 354:111914. http://dx.doi.org/10.1016/j.forsciint.2023.111914

Unuma K, Sato H, Wen S, Makino Y, Hirakawa A, Uemura K. The proportion of false-positives in positive Seratec® prostate-specific antigen SemiQuant test results in postmortem screening for seminal fluid. Leg. Med. (Tokyo). 2023; 62(102243):102243. http://dx.doi.org/10.1016/j.legalmed.2023.102243

Durdle A, Mitchell RJ, van Oorschot RAH. The food preferences of the blow fly Lucilia cuprina offered human blood, semen and saliva, and various nonhuman foods sources. J Forensic Sci. 2016; 61(1):99–103. http://dx.doi.org/10.1111/1556-4029.12912

iNaturalistMX. Clave taxonómica para Lucilia mexicana [Internet], [citado el 2 de abril de 2025]. Disponible en: https://mexico.inaturalist.org/taxa/550806-Lucilia-mexicana

Jaume-Schinkel S, Ibáñez-Bernal S. Catalog of the family Calliphoridae (Diptera: Oestroidea) of Mexico. Acta zoológica Mexicana. 2020; 36(1):1–25. https://doi.org/10.21829/azm.2020.3612237

Merritt RW, Higgins MJ, Wallace JR. Entomology. Siegel JA, Saukko PJ, eds. Encyclopedia of forensic sciences. 1st ed. London: Academic Press; 2000. p. 699–705.

Amendt J, Campobasso CP, Gaudry E, Reiter C, LeBlanc HN, Hall MJR, Eur. Assoc. Forensic Entomol. Best practice in forensic entomology--standards and guidelines. Int. J. Leg. Med. 2007; 121(2):90–104. https://doi.org/10.1007/s00414-006-0086-x

Vergara-Pineda S, de León-Múzquiz H, García-Martínez O, Cantú-Sifuentes M, Landeros-Flores J, Tomberlin JK. Dispersión espacial de larvas de Lucilia sericata y Calliphora coloradensis (Diptera: Calliphoridae) en etapa de postalimentación. Rev. Colomb. Entomol. 2012; 38(1):97–99. https://doi.org/10.25100/socolen.v38i1.8929

Matuszewski S, Hall MJR, Moreau G, Schoenly KG, Tarone AM, Villet MH. Pigs vs people: the use of pigs as analogues for humans in forensic entomology and taphonomy research. Int. J. Legal Med. 2020; 134(2):793–810. http://dx.doi.org/10.1007/s00414-019-02074-5

Berezowski V, Moffat I, Seckiner D, Crebert I, Ellis J, Mallett X. The suitability of using domestic pigs (Sus spp.) as human proxies in the geophysical detection of clandestine graves. J. Forensic Sci. 2024; 69(1):316–28. http://dx.doi.org/10.1111/1556-4029.15419

Matuszewski S, Mądra-Bielewicz A. Field validation of post-mortem interval estimation based on insect development. Part 1: Accuracy gains from the laboratory rearing of insect evidence. Forensic Sci. Int. 2024; 354:111902. http://dx.doi.org/10.1016/j.forsciint.2023.111902

Powers J, van Oorschot RAH, Durdle A. Investigation into the presence of human DNA in the various life stages of forensically relevant Calliphorid species. Aust. J. Forensic Sci. 2019; 51(sup1):S234–7. http://dx.doi.org/10.1080/00450618.2019.1569143

Clery, J. M. Stability of prostate specific antigen (PSA), and subsequent Y-STR typing, of Lucilia (Phaenicia) sericata (Meigen) (Diptera: Calliphoridae) maggots reared from a simulated postmortem sexual assault. Forensic Sci. Int. 2001. 120(1–2), 72–76. https://doi.org/10.1016/s0379-0738(01)00429-7

López-García J, Piña MA, Clark B, Hall MJR, Martín-Vega D. Methods for the optimal preservation of blow fly intra-puparial forms for morphological analysis in forensic casework. Int. J. Legal Med. 2024; 138(4):1769–79. http://dx.doi.org/10.1007/s00414-024-03172-9

Byrd J, Sutton L. Forensic entomology for the investigator. WIREs Forensic Sci. 2020; 2(4):e1370. http://dx.doi.org/10.1002/wfs2.1370